ÿþ<HTML><HEAD><TITLE>35º Conbravet - Congresso Brasileiro de Medicina Veterinária</TITLE><link rel=STYLESHEET type=text/css href=css.css></HEAD><BODY aLink=#ff0000 bgColor=#FFFFFF leftMargin=0 link=#000000 text=#000000 topMargin=0 vLink=#000000 marginheight=0 marginwidth=0><table align=center width=700 cellpadding=0 cellspacing=0><tr><td align=left bgcolor=#cccccc valign=top width=550><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=3><font size=1>35º Conbravet - Congresso Brasileiro de Medicina Veterinária</font></font></strong><font face=Verdana size=1><b><br></b></font><font face=Verdana, Arial,Helvetica, sans-serif size=1><strong> </strong></font></font></td><td align=right bgcolor=#cccccc valign=top width=150><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=1><font size=1>ResumoID:12.491-1</font></em></font></strong></font></td></tr><tr><td colspan=2><br><br><table align=center width=700><tr><td>AREA: <b>Biotecnologia</b><p align=justify><strong>RT-PCR PARA IDENTIFICAÇÃO DO VÍRUS DA CINOMOSE CANINA</strong></p><p align=justify><b>Clarissa Fonseca Caetano </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Paula Fonseca Finger </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Bianca Sica Siedler </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b><u>Lívia Silveira Munhoz </u></b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Camila Oliveira Vilela </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Lilian das Neves Ferreira </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Geferson Fischer </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Gilberto D'avila Vargas </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Telmo Vidor </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>); <b>Silvia Oliveira Hübner </b> (<i>Universidade Federal de Pelotas - UFPel</i>)<br><br></p><b><font size=2>Resumo</font></b><p align=justify class=tres><font size=2>Descreve-se a técnica por RT-PCR para identificação do vírus da cinomose canina em treze amostras de animais suspeitos, uma amostra para o controle positivo para CDV que foi amplificada em células MDCK, uma amostra para o controle negativo (adicionado água ultra pura em vez do cDNA). O processo iniciou-se pela extração de RNA que foi realizada com Trizol, de acordo com o protocolo do fabricante (Invitrogen). A segunda etapa realizada foi a síntese de cDNA utilizando-se 5 µg do RNA total, em uma reação de 25 µl que conteve ainda 150 ng de  random primers (Invitrogen), 1 µl de desoxinucleosideos trifosfatados (dNTP s  10 mM), tampão de síntese (New England Biolabs), 0.1 M DDT, 40 U de RNaseOUT (Invitrogen) e 40 U de Transcriptase reversa M-MuLV (New England Biolabs), segundo a metodologia descrita (Ulett 2000). A técnica do PCR conteve 2 µl de cDNA, 0,25 µl de dNTP (20 mM), tampão - PCR 1 X, 3 mM de MgCl2, 0,3µl de Taq DNA polimerase (1,5 U), e água ultra pura autoclavada para o volume de 25 &#956;l. Os primers utilizados foram descritos no trabalho de Maes et al (2003) e sintetizados para amplificação de um segmento do gene que codifica a nucleoproteína P do CDV (gene P). O primer  forward foi 5 AAG AGG TTA AGG GAA TCG 3 , e o primer  reverse 5 GAG AAA AGC TCA TCA TCG 3 , resultando num produto de 585 pares de bases (bp). Os produtos amplificados pela PCR foram analisados por eletroforese em gel de agarose a 2% em tampão TBE 1X (Tris-Borato 90 mM, EDTA 2 Mm; pH 8,4), sob voltagem constante (180V) por aproximadamente 60 minutos. O gel foi corado em solução contendo 0,3 &#956;l de brometo de etídeo e visualizado sob luz ultravioleta. Foi obtido amplificação da seqüência do gene P do CDV do tamanho esperado através da técnica de RT-PCR para oito das treze amostras testadas. Constatou-se que RT-PCR é um método molecular de diagnóstico com alta sensibilidade e especificidade.</font></p></td></tr></table></tr></td></table></body></html>